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點(diǎn)擊化學(xué)的應(yīng)用——測(cè)定細(xì)胞增殖和 DNA 復(fù)制

更新時(shí)間:2023-08-30      點(diǎn)擊次數(shù):753

細(xì)胞增殖測(cè)定廣泛應(yīng)用于細(xì)胞毒性研究、癌癥研究和細(xì)胞生物學(xué)的許多其他領(lǐng)域。其中許多可以通過(guò)熒光標(biāo)記對(duì)增殖細(xì)胞進(jìn)行可視化,并且適合高通量篩選。

檢測(cè)復(fù)制的 DNA 可以說(shuō)是檢測(cè)增殖的最直接方法。這是通過(guò)使用溴脫氧尿苷 (BrdU)核苷實(shí)現(xiàn)的,該核苷在復(fù)制過(guò)程中融入 DNA。然后,細(xì)胞 DNA 中的這些核苷修飾可以通過(guò)抗 BrdU 抗體檢測(cè)到。盡管具有特異性,但這種測(cè)定方法繁瑣且難以重現(xiàn),因?yàn)樾枰么碳ば栽噭┨幚砑?xì)胞,以使 DNA 暴露于抗體,否則這些抗體不會(huì)穿透細(xì)胞結(jié)構(gòu)。

一種更溫和的替代方案是乙炔基脫氧尿苷 (EdU),可以通過(guò)將其添加到培養(yǎng)基中或注射到動(dòng)物體內(nèi)來(lái)將其遞送至細(xì)胞。摻入 DNA 后,該核苷可在銅 (I) 催化下與各種熒光染料疊氮化物結(jié)合,從而對(duì)復(fù)制的 DNA 進(jìn)行熒光染色。該測(cè)定易于執(zhí)行、快速且可重復(fù)。它不需要對(duì)細(xì)胞進(jìn)行嚴(yán)酷的處理(只需要用 Triton 進(jìn)行透化),因此可以更好地保存細(xì)胞結(jié)構(gòu)。在用疊氮化染料處理和最后的洗滌步驟(步驟 8)后,可以使用具有各種發(fā)射波長(zhǎng)的熒光團(tuán)(例如 Hoechst、DAPI 或熒光標(biāo)記抗體)來(lái)標(biāo)記細(xì)胞。

所需試劑

  1. 5-乙炔基-2'-脫氧尿苷 (EdU)

  2. Cu-TBTA 絡(luò)合物— сlick сhemistry 催化劑

  3. 抗壞血酸— 銅的還原劑

  4. 疊氮化物熒光染料

  5. DMSO,標(biāo)簽級(jí)— 疊氮化物溶劑

  6. Triton X-100(或 Tween-20)

  7. PBS,pH 7.4

  8. 100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4

確切的方案取決于特定的細(xì)胞或組織類型,但一般工作流程如下所述:

  1. 將細(xì)胞/組織與 10–20 μM EdU 孵育所需的時(shí)間。

  2. 用含 3.7% 甲醛的 PBS 固定細(xì)胞 15 分鐘。

  3. 用 PBS 清洗細(xì)胞。

  4. 用含有 0.2% Triton X-100(或 0.5% Tween-20)的 PBS 透化細(xì)胞 30 分鐘。

  5. 再次用 PBS 清洗細(xì)胞。

  6. 在 100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4(對(duì)于磺化疊氮化物)或 100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4,含有 50% DMSO(對(duì)于非-磺化疊氮化物)。該混合物應(yīng)新鮮制備,因?yàn)殂~ (I) 在水溶液中不穩(wěn)定。

  7. 將細(xì)胞與點(diǎn)擊反應(yīng)混合物一起孵育 30 分鐘。

  8. 用 PBS 清洗細(xì)胞。

  9. (可選)如果細(xì)胞必須用不同的熒光團(tuán)標(biāo)記,請(qǐng)使用標(biāo)準(zhǔn)方案繼續(xù)染色。

磺化(水溶性)疊氮化物,例如磺基氰疊氮化物和 AF 疊氮化物,可產(chǎn)生最佳效果。當(dāng)使用非磺化疊氮化物(例如氰疊氮化物或 BDP 疊氮化物)時(shí),確保反應(yīng)混合物中 DMSO 濃度為 50%。


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